- Microscopio
- Tubos de hemolisis
- Pipeta pasteur con chupete
- Porta
- Baño de agua
- Sistema de Filtración.
-REACTIVOS:
En clase preparemos el reactivo ,utilizando agua destilada, solución salina 80ML, citrato sódico20ML y azul cresil brillante 3%.
ACEITE DE INMERSIÓN.
-MUESTRA:
Sangre anticoagulada con EDTA.
-TECNICA:
- Una vez preparada la mezcla ,filtramos antes de verterla en el recipiente .
- La tincion de reticulocitos, es una tincion supravital ,que quiere decir que las células siguen vivas .
- vertemos 3 gotas de sangre con 3 gotas de la coloración en un tubo de ensayo , mezclamos bien y tapamos con papel para-film.
- vertemos el tubo de ensayo al agua maría a 37º durante 5 minutos.
- Cojemos una gota de la mezcla y realizamos un frotis fino , dejamos secar.
- vertemos una gota de aceite de inmersión en el centro del frotis y lo colocamos al microscopio con el objetivo 100 x
-RESULTADOS:
Los hematies aparecen de un color verdoso y los reticulocitos se diferencian porque en el interior aparecen unos hilos de color azulado.
En adultos y niños los valores normales van de 0.5% - 1.5%
se produce reticulopenia en casos de aplasias medular, anemia ferrotipica y anemias que cursan con dificultad en la eritropoyesis.
Por el contrario hay reticulocitosis en anemia hemoliticas ,donde se aumenta el nivel de producción de hematies para contrarrestar su perdida.
La cantidad de reticulocitos expresada en % es un valor relativo referido a una cifra normal de hematíes , cuando existe una anemia con disminución en la cantidad de hematíes se compensa con un aumento de números de reticulocitos.
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