TINCION DE GIEMSA :

-MATERIAL: 

• Microscopio 
• Portas
• Cristalizador
• Puentes de tincion 
• Pipetas pasteur con chupete
• Frascos lavadores
• Tubos de ensayo 
  

-REACTIVOS:

1. Colorante en solución según Giemsa 
2. Solución tampon 7.2 
3. Metanol
4. Aceite de Inmersión.

-MUESTRA:

Sangre capilar o venosa anticoagulada.

- TÉCNICA:

• Preparamos una extension de sangre .
• Colocamos el frotis sobre el puente de tincion, en el cristalizador y en posicion vertical.
• Cubrimos la extension con metanol durante 3 minutos. Escurrimos y los dejamos secar.
• Diluimos en un tubo de ensayo 0.2 ml de Giemsa con 2 ml de tampon 7.2.
  
• Mezclamos suavemente en un tubo y con una pipeta pasteur cubrimos el frotis con la dilucion de colorante ,dejando actuar 25 minutos. 
• Escurrimos y lavamos con agua de grifo, despues lavamos con tampon 7.2 hasta que deje de salir el liquido teñido . dejamos secar en posicion vertical.
• Una vez secado , depositamos una gota de aceite en el porta y observamos al microscopio con el objetivo 100x .

-RESULTADOS:

Se observan los eritrocitos de color rosado, y plaquetas color violeta

Los neutrofilos de color azul  violeta en el nucleo,y citoplasma de color rosa y granulaciones de cojor rojo.

Los eosinofilos se observa un nucleo de color azul violeta ,citoplasma azul y granulos de color anaranjado.

Los basofilos de color purpura en el nucleo y granulaciones de color azul oscuro.

Los monocitos y linfocitos se observan con un nucleo de color violeta ,citoplasma de azul y un poco mas claro los monocitos.

HOJA DE TRABAJO:

1. ¿Cuales son los anticoagulantes mas adecuados para esta técnica? - Heparina y EDTA.
2. ¿Con que reactivo fijamos la extensión ? - Metanol.
3. ¿Cuanto tiempo debe actuar el colorante en la extensión? -  25 minutos.