TINCION DE WRIGHT.

MATERIAL :

• Microscopio.
• Cristalizador.
• Puentes de tincion.
• Pipetas pasteur con chupete.
• Frasco lavador.
• Tubos de ensayo.
• 

REACTIVOS:

Solución de eosina-azul de metileno según wright.

Solución tampon PH 7.2.

Aceite de inmersión.

MUESTRA:

Sangre capilar fresca o venosa anticoagulada . Los anticoagulantes mas adecuados son la heparina y el EDTA.

TECNICA:

1. hacer un frotis sanguineo,dejar secar al aire.
2. Colocamos horizontalmente en el puente de tincion y verter 1ml de azul metileno. Dejamos actuar 1 minuto y lavamos con tampon 7.2 y dejamos secar verticalmente.
3. En un tubo de ensayo diluimos 5 gotas de reactivo de wright y 5 gotas tampon de ph 7.2.mezclamos bien, teñimos la muestra dejar actuar 3-5 minutos lavamos con agua del grifo , lavamos con tampon hasta que deje salir teñida el agua ,dejamos secar horizontalmente

RESULTADOS:

Depositamos una gota de aceite de inmersion y observamos con el objetivo 100 x.

Las células que se observan son : eritrocitos, neutrofilos , eosinofilos  ,basofilos ,monocitos  y linfocitos.

HOJA DE TRABAJO:

¿Que tipo de colorante usamos en esta tincion?

-colorante de wright

¿Que solución empleamos como fijador?

-solución tampon 7,2

¿Cuanto tiempo debe estar en contacto el frotis con el colorante diluido?

-3-5 minutos.